Микробиологическая картина желчи при первичных и повторных эндобилиарных вмешательствах и ее роль в определении рациональной антибиотикотерапии

Введение. Количество исследований, сравнивающих уровни бактериальной контаминации билиарного дерева и чувствительность полученных бактерий к антибиотикам в посевах желчи, полученной при первичных и повторных эндоскопических ретроградных холангиографиях (ЭРХГ), крайне ограничено, однако изучение данного вопроса может значительно повлиять на тактику лечения механической желтухи.

Цель исследования. Сравнение микробиологической картины желчи и чувствительности основных возбудителей к антибактериальной терапии при первичных и повторных эндобилиарных вмешательствах с определением клинической значимости метода.

Материалы и методы. В исследование были включены 43 пациента с ЭРХГ при стриктурах терминального отдела холедоха (20 пациентов с наличием ЭРХГ в анамнезе, 23 пациента с впервые выполняемой ЭРХГ). Сравнивались титры выявленных возбудителей, чувствительность основных возбудителей к антибиотикотерапии.

Результаты. Всего положительных посевов выявлено 86,96 % при первичных вмешательствах и 100 % при повторных. Наиболее часто встречающиеся бактерии – Esherichia coli (E. coli) и Klebsiella pneumoniae (K. pneumoniae). Облигатные анаэробы ни в одном случае выявлены не были. E. coli и K. pneumoniae продемонстрировали полирезистентость к большей части антибактериальных препаратов.

Заключение. Внедрение забора желчи при выполнении эндобилиарных вмешательств для проведения микробиологического анализа с определением чувствительности к антибиотикам в клиническую практику может значительно повлиять на выбор эмпирической и этиотропной антибиотикотерапии и улучшить результаты лечения. Полирезистентность бактерий обусловливает важность проведения аналогичных исследований в других стационарах с целью рационального назначения антибактериальных препаратов.

1. Chandra S., Klair J., Soota K. et al. Endoscopic retrograde cholangiopancreatography obtained bile culture can guide antibiotic therapy in acute cholangitis. Digestive Diseases, 2018, № 37(2), рр. 155–160. https://doi.org/10.1159/000493579

2. Wang C., Yu H., He J. et al. Comparative analysis of bile culture and blood culture in patients with malignant biliary obstruction complicated with biliary infection. J Cancer Res Ter., 2021, Jul, № 17(3), рр. 726–732. https://doi.org/10.4103/jcrt.JCRT_1705_20

3. Sokal A., Sauvanet A., Fantin B. et al. Acute cholangitis: Diagnosis and management. J Visc Surg., 2019, Dec, № 156(6), рр. 515–525. https://doi.org/10.1016/j.jviscsurg.2019.05.007

4. Gomi H., Takada T., Hwang T. et al. Updated comprehensive epidemiology, microbiology, and outcomes among patients with acute cholangitis. J Hepatobiliary Pancreat Sci., 2017, Jun, № 24(6), рр. 310–318. https://doi.org/10.1002/jhbp.452

5. Rhodes A., Evans L., Alhazzani W. et al. Surviving Sepsis Campaign: International Guidelines for Management of Sepsis and Septic Shock: 2016. Intensive Care Med., 2017, Mar, № 43(3), рр. 304–377. https://doi.org/10.1007/s00134-017-4683-6

6. Fangfang W., Wen X., Leyuan Y. 2418 blood culture pathogenic bacteria distribution and drug resistance analysis. Lab Med., 2015, № 30, рр. 163–166.

7. Lamy B., Sundqvist M., Idelevich E. ESCMID Study Group for Bloodstream Infections, Endocarditis and Sepsis (ESGBIES). Bloodstream infections - Standard and progress in pathogen diagnostics. Clin Microbiol Infect., 2020, Feb, № 26(2), рр. 142–150. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2019.11.017

8. Manrai M., Jha A., Singh Shergill S. et al. Microbiology of bile in extrahepatic biliary obstruction: A tropical experience. Indian J Med Microbiol., 2021, Jan, № 39(1), рр. 54–58. https://doi.org/10.1016/j.ijmmb.2020.10.002

9. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам. Рекомендации Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии Российской Федерации, январь, 2021.

10. Kaya M., Beştaş R., Bacalan F. et al. Microbial profle and antibiotic sensitivity pattern in bile cultures from endoscopic retrograde cholangiography patients. World J Gastroenterol., 2012, Jul 21, № 18(27), рр. 3585–3589. https://doi.org/10.3748/wjg.v18.i27.3585

11. Suna N., Yıldız H., Yüksel M. et al. Te change in microorganisms reproducing in bile and blood culture and antibiotic susceptibility over the years. Turk J Gastroenterol., 2014, Jun, № 25(3), рр. 284–290. https://doi.org/10.5152/tjg.2014.6253

12. Takada T., Strasberg S., Solomkin J. et al. Tokyo Guidelines Revision Committee. TG13: Updated Tokyo Guidelines for the management of acute cholangitis and cholecystitis. J Hepatobiliary Pancreat Sci., 2013, Jan, № 20(1), рр. 1–7. https://doi.org/10.1007/s00534-012-0566-y

13. Karpel E., Madej A., Bułdak Ł. et al. Bile bacterial flora and its in vitro resistance pattern in patients with acute cholangitis resulting from choledocholithiasis. Scand J Gastroenterol., 2011, Jul, № 46(7–8), рр. 925–930.https://doi.org/10.3109/00365521.2011.560676

14. Prabhu T., Chandan C., Sudarsan S. et al. Microflora of gall bladder bile in patients undergoing laparoscopic cholecystectomy. Int Surg J., 2018, Jul, № 5(8), рр. 2876–2881. https://doi.org/10.18203/2349-2902.isj20183207

15. Al-Dahmoshi H., Al-Obaidi R., Al-Khafaji N. Pseudomonas aeruginosa - Bioflm Formation, Infections and Treatments. December 2020, рр.1–13. https://doi.org/10.5772/intechopen.95251

16. Rice L. Federal funding for the study of antimicrobial resistance in nosocomial pathogens: no ESKAPE. J Infect Dis., 2008, Apr 15, № 197(8), рр. 1079–1081. https://doi.org/10.1086/533452